大白鼠口服“利糖平”溶液8周后,眼眶后静脉取血做血液学检查,活杀部分动物,腹主动脉取血做血液生化检测。取脏器心、肝、脾、肺、肾、脑、肾上腺、胃、十二指肠计算脏体比,并作病理学检查。其结果表明各给药组与对照组相比均未显示出有毒理意义的变化,剩下的动物作恢复期的状态与给药期无显著性变化。
“利糖平”属中药复方制剂,属三类新药。用“利糖平”原料粉水溶液对大鼠灌胃8周,观察其毒性反应。
材料和方法:
(一) 药物:
1. 名称:“利糖平”实验用其纯原料药粉
2. 提供单位:美国康利制药公司
3. 配制和保存方法:“利糖平”原料药粉为棕黄色混合药粉,试用前用温水溶化24小时,为棕色混合液,于4℃冰箱保存。
(二) 动物:
1. 来源种类 wistar 大鼠,由美国生物实验室提供。
2. 周龄:5周龄
3. 体重:雄性72.0+6.6g 雌性 67.8+7.7g
4. 性别:雌,雄各半
5. 每组动物数:22只
6. 饲养条件:笼养,每笼5-6只,室温20±2℃
(三)给药剂量:
1. 剂量设置理由:依据急性毒性实验和人用推荐临床用量:
a. 急性毒性实验:小鼠PO LD50>208g/kg
大鼠PO LD50>70g/kg
b. 临床拟用方案,用于,糖尿病治疗,口服一次2g,一天3次,连续用药7天。
参照中药新药毒理等研究指南,(实验药理方法学 第二版)徐淑方编,北京人民卫生出版社出版 1991-1535
设二个剂量组时,高剂量组应为人临床剂量的50倍以上。故设计剂量如下:
组别 |
剂量 |
拟用临床剂量的倍数 |
动物数 |
对照组 |
0 |
0 |
22 |
低剂量 |
2 |
10 |
22 |
高剂量 |
10 |
50 |
22 |
2.每只动物给药对照容量:2ml/100g (20ml/kg)
(四)给药途径和周期:灌胃(ig)连续8周
(五)恢复期:二周最后一次给药每活杀14只动物,作血液及血液生化,病理学检查,余下 的8只继续观察,了解毒性反应的恢复情况及可能出现的延迟性毒性。
(六)观察指标
1. 死亡:在实验期间观察动物死亡分布情况
2. 症状:观察动物一般行为活动,腺体分泌,大便性状等,每天记录一次。
3. 体重:每周称二次体重并记录。
4. 进食饮水情况:观察记录动物进食量,饮水量的情况。
(七)实验室检测
1. 血液学:眼眶后静脉业取血作红细胞计数,白细胞读数及血小板及血红蛋白测定。
2. 血液生化:
1). 丙氨酸氨基酸转换微(GPT)赖氏法测定血清中GPT的含量,主要观察肝脏的功能变化。
2). 肌酐含量测定:用苦味酸法测定非蛋白氨的含量(之一)
3). 尿素氮:用二乙酰一肟测定测定血清中尿素的含量,观察药物对动物的肾脏是否有损伤。
4). 总蛋白:用双缩脲法测定,主要观察血浆的变化情况。
5). 白蛋白:用溴甲酚绿与其结合成复合物,比色法测定,用来衡量蛋白营养
6). 麝香草酚浊度测定:主要用于肝脏急性或慢性病的诊断。
3. 病理检查:
1)系统尸检:按常规尸解程序全面而细致的检查。
2)脏器系数:取心、肝、脾、肺、肾、脑、肾上腺、胃、十二指肠,仔细剥离,精确称重(其中肾上腺、胃、十二指肠不称重),并与体重相比,作脏体比较。
3)组织学检查:对照组和高剂量级有异常时才进行。内容如下:
心、肝、脾、肺、肾、脑、肾上腺、胃、十二指肠
(八)恢复期检测:
停药后观察动物的情况,体重变化,一般行为活动,大便性状,进食及饮水情况。了解分析毒性反应的恢复情况和可能出现的延迟性毒性。
(九)常用仪器及统计方法
1. 实验仪器:血球计数仪 cc-180
751 分光光度仪
微聊免疫检测仪
2. 统计方法:用t 检验检测各组间变化均无显著差别。
实验结果:
“利糖平”原粉水溶液(浓度分别为0.1g/ml – 0.5g/ml)对大鼠灌胃,连续8周,严格按上述方法进行。结果如下:
1. 大鼠一般情况:
大鼠灌服高、低剂量的“利糖平”水溶液,行为药理学检查,腺体分泌,大便检查等均未见异常。大鼠一般状态良好,毛色正常,体重呈持续增长趋势,实验过程无死亡,给药组与对照组无明显区别。详见表1。
表1:给药前后体重变化
W0 |
W1 |
W2 |
W3 |
W4 |
W5 |
W6 |
W7 |
W8 |
W9 後一周 |
W10 後 2 周 |
||
對照組 |
F |
74 ± |
111 ± |
170 ± |
190 ± |
247 ± |
265 ± |
291 ± |
317 ± |
399 ± |
369 ± |
- - |
|
6 |
9 |
17 |
22 |
35 |
41 |
48 |
49 |
50 |
33 |
|
|
M |
70 ± |
103 ± |
159 ± |
180 ± |
207 ± |
216 ± |
232 ± |
243 ± |
257 ± |
268 ± |
|
|
10 |
10 |
11 |
14 |
16 |
18 |
21 |
19 |
22 |
38 |
|||
低劑量 |
F |
71 ± |
99 ± |
176 ± |
216 ± |
255 ± |
286 ± |
302 ± |
326 ± |
348 ± |
360 ± |
361 ± |
|
8 |
8 |
14 |
19 |
25 |
29 |
38 |
48 |
46 |
48 |
47 |
|
M |
66 ± |
97 ± |
151 ± |
162 ± |
196 ± |
213 ± |
217 ± |
236 ± |
247 ± |
253 ± |
257 ± |
|
7 |
10 |
12 |
13 |
16 |
20 |
21 |
23 |
27 |
28 |
28 |
||
高劑量 |
F |
71 ± |
106 ± |
174 ± |
206 ± |
242 ± |
263 ± |
298 ± |
322 ± |
347 ± |
352 ± |
360 ± |
|
5 |
13 |
16 |
21 |
23 |
23 |
35 |
35 |
35 |
35 |
36 |
|
M |
69 ± |
96 ± |
143 ± |
166 ± |
186 ± |
186 ± |
219 ± |
234 ± |
231 ± |
238 ± |
246 ± |
|
7 |
10 |
12 |
10 |
12 |
12 |
14 |
9 |
12 |
12 |
13 |
(小数点后按4舍5入原则化整)
2. 血液学检查:
给药结束后,检查的血液学五项指标和六项生化指标均在正常范围内,与对照相比未见毒理学意义的变化。详见表2、3。
表2. 血液学检测
RBC |
HGB |
PLFC |
WBC |
WBC 分类 % |
||||||
( 106/mm3) |
(g/dl) |
(103/mm3) |
(103/mm3) |
N |
E |
B |
L |
M |
||
對照組 |
F M |
8.6 ± 0.4 |
16 ± 1 |
753 ± 95 |
14 ± 3 |
12 ± 7 |
0.4 ± 0.8 |
- - |
87 ± 7 |
1 ± 2 |
8.5 ± 0.5 |
16 ± 1 |
775 ± 125 |
13 ± 4 |
16 ± 8 |
0.3 ± 0.8 |
- - |
82 ± 7 |
1 ± 2 |
||
8.5 ± 0.5 |
16 ± 1 |
764 ± 107 |
13 ± 3 |
14 ± 8 |
0.4 ± 0.7 |
- - |
84 ± 7 |
1 ± 2 |
||
低劑量 |
F M |
8.9 ± 0.6 |
17 ± 1 |
777 ± 127 |
14 ± 3 |
20 ± 9 |
- - |
- - |
78 ± 8 |
2 ± 2 |
8.6 ± 0.4 |
17 ± 1 |
747 ± 108 |
13 ± 3 |
22 ± 6 |
- - |
- - |
76 ± 7 |
2 ± 2 |
||
8.7 ± 0.5 |
17 ± 1 |
762 ± 114 |
13 ± 3 |
21 ± 7 |
- - |
- - |
77 ± 7 |
2 ± 2 |
||
高劑量 |
F M |
8.7 ± 0.5 |
16 ± 2 |
736 ± 65 |
14 ± 2 |
17 ± 7 |
- - |
- - |
82 ± 8 |
1 ± 2 |
8.5 ± 0.4 |
16 ± 1 |
797 ± 55 |
13 ± 3 |
28 ± 11 |
- - |
- - |
72 ± 11 |
0 |
||
8.6 ± 0.4 |
16 ± 1 |
766 ± 66 |
13 ± 2 |
22 ± 11 |
- - |
- - |
77 ± 10 |
1 ± 2 |
表3. 生化指标测定结果:
GPT |
BUN |
白蛋白 |
總蛋白 |
肌酐 |
TTT |
||
( U ) |
( mg/dl) |
( g/dl) |
( g/dl) |
( mg/dl) |
( 濁度) |
||
對照組 |
F M |
11.2 ± 1.1 |
13.3 ± 1.7 |
3.4 ± 0.2 |
6.5 ± 0.5 |
1.3 ± 0.2 |
- - |
11.7 ± 1.1 |
13.2 ± 1.4 |
3.4 ± 0.2 |
6.5 ± 0.4 |
1.3 ± 0.1 |
- - |
||
11.5 ± 1.2 |
13.3 ± 1.5 |
3.2 ± 0.2 |
6.5 ± 0.5 |
1.3 ± 0.2 |
- - |
||
低劑量 |
F M |
10.2 ± 1.6 |
12.8 ± 2.2 |
3.5 ± 0.2 |
6.6 ± 0.4 |
1.3 ± 0.2 |
- - |
10.7 ± 1.1 |
14.7 ± 1.7 |
3.2 ± 0.2 |
6.5 ± 0.4 |
1.5 ± 0.2 |
- - |
||
10.5 ± 1.3 |
13.5 ± 2.0 |
3.3 ± 0.2 |
6.5 ± 0.4 |
1.4 ± 0.2 |
- - |
||
高劑量 |
F M |
10.2 ± 1.6 |
12.8 ± 1.8 |
3.3 ± 0.2 |
6.8 ± 0.5 |
1.4 ± 0.2 |
- - |
10.7 ± 1.1 |
14.7 ± 1.1 |
3.3 ± 0.2 |
6.3 ± 0.2 |
1.4 ± 0.2 |
- - |
||
10.4 ± 1.3 |
13.7 ± 1.7 |
3.3 ± 0.2 |
6.4 ± 0.5 |
1.4 ± 0.2 |
- - |
TTT 实验时浊度为零,絮状反应为阴性
3. 病理学检查:
实验结束后对活杀的动物进行大体解剖,主要脏器观察未见异常,九种脏器的组织病理检查,并未发现异常。六种主要脏器系数列于表4。对照与给药组无显著差异
表4. 脏器系数比较
心 |
肝 |
脾 |
肺 |
腎 |
腦 |
|||
對照組 |
F M |
0.36 ± 0.02 |
3.06 ± 0.31 |
0.37 ± 0.05 |
0.58 ± 0.12 |
0.68 ± 0.05 |
0.55 ± 0.07 |
|
0.41 ± 0.04 |
3.15 ± 0.29 |
0.30 ± 0.03 |
0.65 ± 0.12 |
0.75 ± 0.05 |
0.65 ± 0.05 |
|
||
0.38 ± 0.04 |
3.11 ± 0.29 |
0.34 ± 0.05 |
0.62 ± 0.12 |
0.72 ± 0.07 |
0.60 ± 0.08 |
|
||
低劑量 |
F M |
0.38 ± 0.03 |
2.98 ± 0.18 |
0.31 ± 0.07 |
0.53 ± 0.07 |
0.73 ± 0.09 |
0.54 ± 0.09 |
|
0.4 ± 0.06 |
2.99 ± 0.21 |
0.30 ± 0.05 |
0.67 ± 0.14 |
0.79 ± 0.05 |
0.68 ± 0.05 |
|
||
0.39 ± 0.05 |
2.99 ± 0.19 |
0.30 ± 0.06 |
0.60 ± 0.13 |
0.76 ± 0.07 |
0.61 ± 0.10 |
|
||
高劑量 |
F M |
0.39 ± 0.02 |
3.03 ± 0.17 |
0.39 ± 0.04 |
0.53 ± 0.04 |
0.66 ± 0.05 |
0.49 ± 0.06 |
|
0.45 ± 0.03 |
2.93 ± 0.13 |
0.30 ± 0.02 |
0.65 ± 0.04 |
0.71 ± 0.03 |
0.69 ± 0.09 |
|
||
0.42 ± 0.04 |
2.99 ± 0.15 |
0.35 ± 0.06 |
0.59 ± 0.07 |
0.68 ± 0.05 |
0.59 ± 0.13 |
4. 停药后观察结果:
实验给药结束后,部分留存的大鼠继续正常喂养观察两周。在此两周内大鼠的行为活动,腺体分泌等与治疗组相比未见异常,进食饮水良好,体重似呈缓慢增长趋势。与给药组及对照组的增长趋势相近,活杀后组织病理学检查未见异常,说明未有迟发性毒性反应。(由于药液浓度和最大灌胃允许容量的限制,未再增加剂量)。
结论:
“利糖平”原料水溶液以2g/kg, 10g/kg 剂量(相当于人临床剂量的10倍、50倍),给大鼠灌胃连续8周,对大鼠一般无明显影响,血液学,生化学,大体解剂,组织病理学检查均未见异常。大鼠停药后两周状态良好,行为学,组织病理学等检查未见迟发性毒性指症。